Metody pro detekci imunitní funkce zvířat

Testovací metody in vitro pro pozdní vlasové-alergické reakce na vlasy Testování kůže a indukce kontaktní alergie jsou dvě běžné metody pro detekci pozdních vlasů-indukujících alergické reakce (DTH).

Při kožních testech byla vyvolána-odpověď na antigeny, které způsobily, že byl pacient citlivý, a kontaktní alergie byla schopnost testovat schopnost příjemce být citlivý na látky, které nebyly nikdy exponovány. 1. Kožní test s diagnózou kožního testu DTH, běžně používané antigeny mají čisté proteinové deriváty (PPD) bakterií TBC, injekce viru příušnic, candidadein atd. v malém množství rozpustného kožního antigenu, v lidském uchu2 do 48 malých, změřte velikost červených a oteklých tvrdých uzlů, průměr tvrdého uzlu větší než 10 mm je považován za pozitivní. Ukazuje, že subjekt má určitý stupeň buněčné imunity vůči patogenu, pokud kožní test nereaguje, může použít vyšší koncentraci antigenu opakovaný test, pokud stále není odpověď negativní, je nutné vyloučit technickou chybu kožního testu, může se také jednat o subjekt, který nikdy nebyl vystaven tomuto antigenu, může být také způsoben nedostatečností buněčné imunitní funkce nebo nedostatkem buněčné imunitní funkce,

nebo nereaktivní v důsledku závažných infekcí (spalničky, chronická difúzní tuberkulóza). 2. Kontaktní alergie často využívají sloučeniny s nízkou molekulovou hmotností, jako je kontaktní alergie vyvolaná dinitrol-chlorbenzenem (DNCB). Sloučeniny se vážou na kožní proteiny, aby vyvolaly DTH reakce. Při testech na zvířatech se kůže jeví jako pozitivní, pokud se kůže jeví jako pozitivní po 7 až 10 dnech stimulace po první aplikaci DNCB na kůži.

Tento experiment už lidé nepoužívají.

In vitro detekční metoda buněčné imunity In vitro detekce počtu a funkce lymfocytů, snazší odběr krevních vzorků, v první řadě potřeba izolovat nebo purifikovat lymfocyty, obecně pomocí glutalyson-panfotonového glutaminu s podílem 1,077 lymfocytů stratifikační tekutina, kdy se krev překrývá na vrchu lymfocytů, centrifugace polymorfovaných bílých lymfocytů (10,9 primárních červených krvinek, centrifugace červených krvinek 1,090), podíly lymfocytů (1,070) jsou různé a navzájem oddělené. Lymfocyty a monocyty tvoří tenkou vrstvu v místě spojení plazmy a stratifikace.

Pečlivě rozdělte tuto tenkou vrstvu buněk, z nichž lymfocyty tvořily 80 %, mononukleóza 20 %, lymfocyty 80 %, B buňky tvořily 4 % až 10 %, jako non-DT, non-B buňky. ⑴ E-věnec: povrch lidských T buněk má receptor SRBC (CD2) se může vázat na SRBC a vytvořit strukturu podobnou růžovému{10}}kruhu, suspenze RBM a SRBC izolované vrstvenou kapalinou smíchanou s vyváženým fyziologickým roztokem obsahujícím sérum, kultivované při 37 stupních C 5 až 10 minut při 4 stupních C přes noc, odeberte buněčnou suspenzi přibližně 80 % krevních lymfocytů v počtu 70 % peri lymfocyty tvoří věnce neboli T buňky.

V současné době se tato metoda používá k izolaci T-buněk bez nutnosti počítání T-buněk. (2) Počítání T buněk s monoklonálními protilátkami: lidská PBM se rozdělí na tři stejné části, pre-protilátky myší proti-lidskému CD3, CD4 a CD8 se zkombinují s buňkami a poté se druhá protilátka králičí anti{8}}myší IgG značená FITC použije pro nepřímé imunofluorescenční výsledky barvení PBM nebo průtokový cytometr, výsledky fluorescenčního barvení PBM v cytometru cd3 protilátky barvily fluorescenční buňky nazývané CD3-plus buňky nebo celkové T buňky. Normální lidé v PBM T buňkách tvořili 70 % až 80 %. Součet CD4-plus buněk a CD8-buněk u normálních lidí by měl být konzistentní s počtem CD3-buněk. Poměr CD4-plus buněk k CD8-buňkám je u normálních lidí asi 2/1, zatímco poměr pacientů s AIDS je menší než 1,7.